糖尿病作為一種常見的慢性疾病，給患者的生活帶來了極大的困擾。近年來，干細胞治療在糖尿病領(lǐng)域展現(xiàn)出了巨大的潛力。在進行干細胞治療糖尿病之前，對干細胞進行恰當?shù)奶幚砗团囵B(yǎng)至關(guān)重要。本文將詳細探討干細胞治療糖尿病前細胞的處理和培養(yǎng)方法。

干細胞治療糖尿病前，細胞需要如何處理和培養(yǎng)？

首先需要選擇細胞來源（自體和異體干細胞）

自體誘導(dǎo)多能干細胞（iPSCs）

• 來源：從患者自身的體細胞（如皮膚細胞、血液細胞等）中提取，通過重編程技術(shù)誘導(dǎo)成多能干細胞.
• 作用機制：具有分化為各種細胞類型的潛能，可以被誘導(dǎo)分化為具有分泌胰島素功能的胰島β細胞，從而恢復(fù)患者的胰島功能。

自體外周血干細胞（PBSCs）

• 來源：從患者自身的外周血液中分離提取。
• 作用機制：通過移植到患者體內(nèi)，促進胰島β細胞的再生和修復(fù)，改善胰島功能。

自體間充質(zhì)干細胞（MSCs）

• 來源：廣泛存在于患者自身的骨髓、脂肪、胎盤和臍帶等組織中。
• 作用機制：通過分泌多種細胞因子和生長因子，發(fā)揮抗炎、免疫調(diào)節(jié)、促血管生成、細胞再生修復(fù)的作用，調(diào)節(jié)胰島素敏感性，改善β細胞功能障礙。

異體間充質(zhì)干細胞（MSCs）

• 來源及特性：
  • 間充質(zhì)干細胞可以從多種組織中獲取，如骨髓、脂肪組織、臍帶血和胎盤等。它具有自我更新能力和多向分化潛能。例如，從骨髓中提取的間充質(zhì)干細胞可以在合適的誘導(dǎo)條件下分化為骨細胞、軟骨細胞和脂肪細胞等多種細胞類型。

異體胰島干細胞

• 來源及特性：胰島干細胞主要來源于胰腺組織，它們具有分化為胰島各種細胞類型（包括胰島 α 細胞、胰島 β 細胞、胰島 δ 細胞等）的潛能。
• 在胚胎胰腺發(fā)育過程中，這些干細胞可以產(chǎn)生大量的胰島細胞，而在成年胰腺中，也存在少量的胰島干細胞，它們在一定條件下可以被激活并參與胰島細胞的更新和修復(fù)。

異體造血干細胞（HSCs）

• 來源及特性：
  • 造血干細胞主要來源于骨髓、外周血和臍帶血。它是一種能夠自我更新并分化為各種血細胞（如紅細胞、白細胞、血小板等）的多能干細胞。造血干細胞具有歸巢特性，即它們可以遷移到身體需要造血重建的部位。

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干細胞的處理

干細胞分離與純化

密度梯度離心法：

• 原理：根據(jù)不同細胞成分的密度差異，利用密度梯度離心介質(zhì)（如 Ficoll – Hypaque）來分離干細胞。當離心力作用時，密度不同的細胞會分層，從而可以收集目標干細胞。
• 操作步驟：將采集到的骨髓、血液等樣本小心地鋪在密度梯度離心介質(zhì)的上層，然后放入離心機，以適當?shù)霓D(zhuǎn)速（如 1500 – 2000 轉(zhuǎn) / 分鐘）和時間（如 20 – 30 分鐘）離心。離心后，干細胞會聚集在特定的層次，用移液器小心地將其吸出。

免疫磁珠分選法：

• 原理：基于細胞表面標志物的特異性抗體。將帶有磁性的微珠與能識別干細胞表面特定標志物的抗體結(jié)合，當這些磁珠 – 抗體復(fù)合物與細胞樣本混合時，會與目標干細胞結(jié)合。然后通過磁場將結(jié)合了磁珠的干細胞分離出來。
• 操作步驟：首先制備免疫磁珠 – 抗體復(fù)合物，將其加入細胞樣本中，在適當?shù)臏囟龋ㄈ?4℃）和時間（如 30 – 60 分鐘）下孵育，使復(fù)合物與干細胞充分結(jié)合。然后將樣本置于磁場中，被磁珠標記的干細胞會吸附在管壁上，去除未吸附的細胞，最后將吸附的干細胞從磁場中取出，收集備用。

流式細胞術(shù)分選法：

• 原理：流式細胞儀能夠檢測細胞的多種物理和化學(xué)特性，如細胞大小、顆粒度、熒光標記等。通過對細胞表面標志物進行熒光標記，流式細胞儀可以精確地識別和分選目標干細胞。
• 操作步驟：首先用熒光標記的抗體對細胞樣本進行染色，標記干細胞的特定標志物。然后將樣本放入流式細胞儀，儀器會逐個檢測細胞的熒光信號等特征。根據(jù)預(yù)設(shè)的分選標準（如特定的熒光強度范圍），儀器會將符合要求的干細胞分選到收集管中。

干細胞的培養(yǎng)

培養(yǎng)前處理

細胞清洗

• 目的：
  • 在干細胞分離后，其表面或周圍可能殘留有分離試劑（如密度梯度離心介質(zhì)、免疫磁珠分選時的抗體 – 磁珠復(fù)合物、流式細胞術(shù)分選后的熒光標記抗體等）。這些殘留物質(zhì)可能會對干細胞的后續(xù)培養(yǎng)產(chǎn)生不良影響，如干擾細胞生長信號通路、引起細胞毒性反應(yīng)等。因此，清洗細胞是為了去除這些雜質(zhì)，為細胞創(chuàng)造一個純凈的培養(yǎng)環(huán)境。
• 操作方法：
  • 通常使用磷酸鹽緩沖液（PBS）進行清洗。將分離得到的干細胞懸浮液轉(zhuǎn)移至離心管中，加入適量的 PBS（一般為細胞懸液體積的 3 – 5 倍），輕輕顛倒離心管使細胞與緩沖液充分混合。然后將離心管放入離心機，以相對較低的轉(zhuǎn)速（如 1000 – 1200 轉(zhuǎn) / 分鐘）離心 5 – 10 分鐘。離心后，細胞沉淀在管底，小心地吸出上清液（含有雜質(zhì)的緩沖液）。重復(fù)上述步驟 2 – 3 次，直到上清液清澈，基本不含雜質(zhì)。

細胞計數(shù)和活力檢測

• 細胞計數(shù)：
  • 目的：準確了解干細胞的數(shù)量對于后續(xù)的培養(yǎng)操作至關(guān)重要。合適的細胞接種密度是保證細胞正常生長和增殖的關(guān)鍵因素之一。如果接種密度過高，細胞可能會因為營養(yǎng)物質(zhì)競爭、代謝廢物積累等原因生長不良；而接種密度過低，則可能會導(dǎo)致細胞生長緩慢，不能充分利用培養(yǎng)資源。
  • 操作方法：
    • 血細胞計數(shù)板法：將清洗后的干細胞用適量的培養(yǎng)基重懸，制成細胞懸液。然后，使用血細胞計數(shù)板進行計數(shù)。先將血細胞計數(shù)板的蓋玻片蓋好，用移液器吸取少量細胞懸液，從計數(shù)板的邊緣緩緩滴入，使細胞懸液自然充滿計數(shù)室。在顯微鏡下，根據(jù)計數(shù)室的方格，按照一定的規(guī)則（如計數(shù)四角和中央五個中方格內(nèi)的細胞數(shù)）進行計數(shù)。最后根據(jù)計數(shù)室的規(guī)格和稀釋倍數(shù)，計算出細胞濃度（細胞數(shù) / 毫升）。
    • 自動細胞計數(shù)儀法：現(xiàn)代的自動細胞計數(shù)儀可以更快速、準確地計數(shù)細胞。將細胞懸液按照儀器的要求進行適當稀釋后，將樣本加入計數(shù)儀的樣本槽中。計數(shù)儀通過光學(xué)或電學(xué)原理，自動識別和計數(shù)細胞，并直接給出細胞濃度和其他相關(guān)參數(shù)（如細胞大小分布等）。
• 活力檢測：
  • 目的：檢測干細胞的活力可以評估細胞的質(zhì)量，只有活力高的細胞才適合用于培養(yǎng)和后續(xù)的治療。細胞活力受到多種因素的影響，如采集過程中的損傷、分離和純化方法的影響等。
  • 操作方法 – 臺盼藍染色法：將細胞懸液與 0.4% 的臺盼藍溶液按照一定比例（如 1:1）混合，在室溫下靜置 3 – 5 分鐘。臺盼藍是一種細胞活性染料，它不能透過活細胞完整的細胞膜，而死細胞的細胞膜通透性增加，會被臺盼藍染成藍色。然后，使用血細胞計數(shù)板或顯微鏡載玻片，在顯微鏡下觀察細胞。隨機選取幾個視野，計數(shù)未染色的活細胞和染色的死細胞的數(shù)量，通過以下公式計算細胞活力：細胞活力（%）=（活細胞數(shù) / 總細胞數(shù)）×100%。一般要求干細胞的活力在 90% 以上才適合進行培養(yǎng)。

培養(yǎng)的選擇

基礎(chǔ)培養(yǎng)基類型：

• 常用的基礎(chǔ)培養(yǎng)基包括 DMEM（Dulbecco’s Modified Eagle Medium）高糖培養(yǎng)基和 α – MEM（Minimum Essential Medium – α）培養(yǎng)基。DMEM 高糖培養(yǎng)基含有豐富的葡萄糖和氨基酸，能為干細胞提供充足的能量和營養(yǎng)物質(zhì)，適合大多數(shù)干細胞的生長。α – MEM 培養(yǎng)基則更側(cè)重于為細胞提供必需的營養(yǎng)成分，如維生素、礦物質(zhì)等，其成分相對更簡單、更接近細胞的生理環(huán)境，對于一些較為敏感的干細胞培養(yǎng)可能更合適。

添加成分：

• 血清：胎牛血清（FBS）是最常用的添加成分，一般添加量為 10% – 20%。胎牛血清中富含多種生長因子，如表皮生長因子（EGF）、成纖維細胞生長因子（FGF）等，這些生長因子能夠刺激干細胞的增殖和分化。同時，血清還含有多種蛋白質(zhì)、氨基酸和維生素等營養(yǎng)成分，為干細胞的生長提供全面的營養(yǎng)支持。不過，由于血清成分復(fù)雜，可能存在批間差異和潛在的病原體污染風(fēng)險，所以也有研究在探索使用無血清培養(yǎng)基。
• 抗生素：為防止細菌和真菌污染，通常會添加青霉素和鏈霉素。一般使用的終濃度為 100 U/mL 青霉素和 100μg/mL 鏈霉素。這樣可以在細胞培養(yǎng)過程中有效抑制常見細菌的生長，但要注意長期使用抗生素可能會導(dǎo)致耐藥菌的產(chǎn)生，所以如果細胞培養(yǎng)環(huán)境比較穩(wěn)定，也可以考慮適時停用抗生素。
• 生長因子和誘導(dǎo)劑（如果需要誘導(dǎo)分化）：對于希望誘導(dǎo)干細胞向胰島樣細胞分化用于糖尿病治療的情況，需要添加特定的生長因子和誘導(dǎo)劑。例如，尼克酰胺是一種常用的誘導(dǎo)劑，它可以促進干細胞向胰島 β 細胞方向分化。激活素 A 也被廣泛應(yīng)用，它可以在細胞分化的早期階段發(fā)揮作用，引導(dǎo)干細胞向內(nèi)胚層細胞分化，為后續(xù)形成胰島樣細胞奠定基礎(chǔ)。這些生長因子和誘導(dǎo)劑的濃度和添加時間需要根據(jù)具體的實驗方案和干細胞類型進行精確調(diào)整。

培養(yǎng)條件的設(shè)定

溫度：

• 人體細胞的生理溫度是 37℃，干細胞培養(yǎng)也通常保持在這個溫度。這是因為細胞內(nèi)的酶等生物活性物質(zhì)在 37℃時能夠發(fā)揮最佳的功能。如果溫度過高，會導(dǎo)致酶失活、細胞膜流動性改變等問題，使細胞代謝紊亂甚至死亡；而溫度過低，則會使細胞的代謝活動減慢，生長和增殖受到抑制。

二氧化碳濃度：

• 培養(yǎng)環(huán)境中的二氧化碳濃度一般維持在 5% 左右。這是因為培養(yǎng)基中通常含有緩沖體系，如碳酸氫鈉（NaHCO?）。二氧化碳可以與培養(yǎng)基中的碳酸氫鈉相互作用，根據(jù)以下化學(xué)方程式調(diào)節(jié)培養(yǎng)基的 pH 值：CO? + H?O + NaHCO? ? H?CO? + NaHCO? ? 2Na? + 2HCO??。
• 當二氧化碳濃度合適時，可以使培養(yǎng)基的 pH 值穩(wěn)定在 7.2 – 7.4 的適宜范圍內(nèi)，為干細胞的生長提供穩(wěn)定的酸堿度環(huán)境。

濕度和氣體交換：

• 培養(yǎng)箱內(nèi)的濕度需要保持在 95% 左右，以防止培養(yǎng)基過度蒸發(fā)。同時，培養(yǎng)容器需要有適當?shù)耐笟庑?，以保證細胞能夠獲得足夠的氧氣和排出二氧化碳。
• 例如，培養(yǎng)瓶通常有透氣的瓶蓋，多孔板也會有透氣的封口膜，這些設(shè)計可以在防止污染的同時滿足細胞對氣體交換的需求。

細胞接種與培養(yǎng)過程

接種密度：

• 合適的接種密度對于干細胞的生長和增殖至關(guān)重要。一般來說，間充質(zhì)干細胞的接種密度在 1×103 – 1×10?個 /cm2 左右。如果接種密度過低，細胞之間的信號交流不足，可能會導(dǎo)致細胞生長緩慢甚至停滯
• 而接種密度過高，則會導(dǎo)致細胞之間競爭營養(yǎng)物質(zhì)和生長空間，引起細胞死亡或分化異常。接種密度的具體數(shù)值需要根據(jù)干細胞的類型、來源以及培養(yǎng)目的等因素進行調(diào)整。

培養(yǎng)過程中的觀察與換液：

• 在培養(yǎng)過程中，需要定期觀察細胞的生長狀態(tài)。可以使用倒置顯微鏡觀察細胞的形態(tài)、大小、密度等變化。一般在細胞接種后的 24 – 48 小時內(nèi)，細胞會逐漸貼壁（對于貼壁生長的干細胞），開始生長和增殖。隨著培養(yǎng)時間的延長，細胞數(shù)量會逐漸增加。
• 為了給細胞提供充足的營養(yǎng)物質(zhì)并清除代謝廢物，需要定期更換培養(yǎng)基。通常每隔 2 – 3 天更換一次培養(yǎng)基，具體的換液頻率也可以根據(jù)細胞的生長速度和培養(yǎng)基的消耗情況進行調(diào)整。

傳代培養(yǎng)：

• 當細胞生長達到一定密度（如 80% – 90% 匯合度）時，需要進行傳代培養(yǎng)。傳代培養(yǎng)可以擴大細胞數(shù)量，同時也有助于保持細胞的活力和正常的生長特性。傳代培養(yǎng)的方法主要是使用胰蛋白酶或其他細胞消化酶將細胞從培養(yǎng)容器的壁上脫離下來，然后將細胞懸液按照一定的比例（如 1:3 或 1:4）接種到新的培養(yǎng)容器中，繼續(xù)培養(yǎng)。
• 在傳代過程中，要注意酶的濃度和消化時間，避免過度消化導(dǎo)致細胞損傷。

總結(jié)

干細胞治療糖尿病為患者帶來了新的希望，而在治療前對干細胞進行科學(xué)合理的處理和培養(yǎng)是確保治療效果和安全性的關(guān)鍵。嚴格遵守實驗室規(guī)范和質(zhì)量控制標準，不斷探索和完善干細胞處理與培養(yǎng)技術(shù)，將為糖尿病的治療開辟更加廣闊的前景。

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